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Active Motif
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5148 人阅读发布时间:2018-10-30 15:30
WesternBlot检测结果显示两种细胞在加入抑制剂之后H3K27me3水平出现了显著的降低。
| A. KARPAS-422细胞使用1.5uM CPI-360分别处理4天和8天 |
| B. PC9细胞使用1uM GSK126处理5天 |
然而,当使用ChIP-Seq方法来想进一步检测加入抑制剂后H3K27me3在全基因组范围的分布变化的时候,却发现加入抑制剂样本组和加入DMSO样本之间没有差别。
一个看起来很直接的解决问题的方法是减少建库过程中的PCR循环数。
然而事实上,即使建库之后的DNA保留了建库之前沉淀下来的DNA量的差别,这种差别也会在cluster generation时丢失。
为了保证同一泳道不同样本之间数据量相同,每个样本的上样量是一样的。
为了解决这一问题,Active Motif 开发了果蝇染色质Spike-In技术,通过加入对照“保留”样本之间的差别。
标准的ChIP反应是使用样本染色质和抗体建立的。在“Spike-in”校正体系中,黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)染色质在免疫反应之前加入到样本染色质中混合。
免疫沉淀时不仅加入目标蛋白特异性抗体,同时也加入特异性的果蝇组蛋白变体H2Av抗体,这样目标蛋白抗体沉淀目标蛋白结合的DNA,果蝇组蛋白变体H2Av抗体沉淀出部分果蝇染色质。
沉淀出的所有DNA用于建库和测序。
测序之后,序列标签被分别比对到样本(如:人,小鼠等)基因组和果蝇基因组。因为不同样本之间加入的起始果蝇染色质是一样多的,理论上沉淀下来的DNA量也应该是一样的,这样不同样本之间的果蝇序列标签数就可以作为标准,用于校正样本之间的标签序列数。

使用这一方法成功检测到了EZH2抑制剂处理后全基因组H3K27me3水平的变化。

Spike-in 技术已经应用于Active Motif 提供的ChIP-Seq技术服务。基于广大用户的需求,近期Active motif 也推出了Spike-in 产品。
>> 往期ChIP实验相关内容:
【Active Motif 实验技术】ChIP 实验染色质超声破碎指南(上篇)
【Active Motif 实验技术】: ChIP 实验染色质超声破碎指南(下篇)
【Active Motif 实验技术】如何判断ChIP是否成功?
【Active Motif 实验技术】如何才能做好 ChIP 实验?
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